El estudio hematológico es una práctica de rutina fundamental para el diagnóstico de las patologías. Todo empieza con una correcta toma de muestras sanguíneas.

Toma de muestras

La venipunción se ha de realizar de la forma más cómoda y menos estresante para el ani­mal, lo cual, además de evitar accidentes, im­pedirá alteraciones secundarias al estrés. Si es posible, es preferible obtener la muestra de una vena central (yugular) con un dispositivo con tubo de vacío (Vacutainer), pues se evi­ta en gran medida la hemolisis y agregación plaquetaria que aparece en venas periféricas como la cefálica. Respecto al anticoagulante, siempre será aconsejable el uso de EDTA, que permite una mejor conservación de la mor­fología celular. La heparina, si bien permite realizar adecuadamente los contajes, altera la morfología celular y conduce a errores en el estudio del frotis sanguíneo.

Técnicas utilizadas para el estudio hematológico

Vamos a citar las más frecuentes.

Microhematocrito

La técnica del microhematocrito nos permite obtener el hematocrito o volumen que ocupan en el plasma los elementos formes, básicamen­te los eritrocitos. Para ello, introducimos en la muestra sanguínea un pequeño tubo de vidrio y dejamos que se llene por capilaridad un 75% del mismo. A continuación revestimos uno de los extremos con un material inerte (por ejem­plo, plastilina) y centrifugamos durante 5 mi­nutos (normalmente en una centrífuga adapta­da que alcanza velocidades de 11.000-15.000 rpm). En el tubo aparecerán varias capas: una correspondiente a los glóbulos rojos, otra inter­media con el resto de elementos formes y una última capa de plasma. El hematocrito se cal­cula entonces como el porcentaje de la mues­tra que se corresponde a los eritrocitos, para lo cual existen tablas y aparatos que ayudan a realizar la conversión (figura 1).

Contajes manuales

Para realizar los contajes manuales necesitamos una cámara de Neubauer, un cubreobjetos y pipetas con bulbo para realizar diluciones de la muestra. La cáma­ra de Neubauer (figura 2) muestra una cuadrí­cula de 9 espacios. El central aparece subdividi­do en 25 cuadrados que a su vez se dividen en 16 espacios, en los cuales realizaremos el con­taje celular, partiendo de una dilución adecuada (1:200 para eritrocitos; 1:20 para leucocitos y 1:100 para plaquetas). En una cámara de Neu­bauer prototipo, el número de células por mi­lilitro se obtiene multiplicando el contaje total por un factor de conversión según la dilución. En la figura 2 aparece la metodología de contaje de forma más detallada. Los contajes manuales muestran errores significativos respecto a los automáticos, sobre todo en los leucocitos.

Contadores automáticos

La mayoría de los analizadores hematológicos en el mercado nos permiten obtener el número de eritrocitos totales, hemoglobina, hematocri­to y el contaje de leucocitos, así como distin­tos índices eritrocitarios: volumen corpuscular medio (VCM), que representa el tamaño medio de los glóbulos rojos; hemoglobina corpuscular media (HCM) y concentración de hemoglobina corpuscular media (CHCM).

A pesar de la rapidez y facilidad a la hora de obtener estos valores, hemos de tener pre­sentes una serie de limitaciones. Por ejemplo, en el caso de veterinaria, la mayoría de estos analizadores no reconocen de forma exacta las distintas poblaciones leucocitarias, por lo que siempre será necesario realizar un contaje dife­rencial en el frotis sanguíneo. De igual forma, los contajes plaquetarios automáticos han de valorarse con suma cautela, dada la tendencia a la formación de agregados plaquetarios. Por último, la presencia de glóbulos rojos nuclea­dos o macroplaquetas puede también producir errores de lectura.

Determinados analizadores, como los contado­res de detección por láser, facilitan una gráfica con la distribución del tamaño y contenido en hemoglobina de las células medidas

Frotis sanguíneo

El estudio citológico sanguíneo no requiere aparataje especial, y es una técnica fácil y barata que permite identificar anomalías morfológicas en las células sanguíneas.

Para efectuar un frotis sanguíneo depositaremos una gota de sangre sobre un porta limpio y reali­zaremos la extensión según los pasos de la figura 3. Para evitar artefactos, el porta superior nunca ha de avanzar sobre la gota, sino que ha de acer­carse de forma retrógrada permitiendo que la sangre se expanda por capilaridad en su parte trasera para, a continuación, realizar un movimiento rá­pido y decidido sin separar ambos portas.

Ya desde este punto inicial podemos adaptar la técnica a nuestras necesidades. Por ejemplo, un ángulo más agudo entre ambos portas da lugar a una extensión más fina (ideal si existe deshi­dratación o hemoconcentración), mientras que un ángulo mayor provoca una muestra más gruesa (conveniente en cuadros de anemia muy grave, véase figura 3).

El objetivo último de la extensión es obtener una amplia zona de monocapa (donde las cé­lulas se disponen independientes en un solo plano), que permite una evaluación correcta del frotis.

De forma rutinaria, las extensiones sanguíneas se tiñen con tinciones rápidas de tipo Roma­nowsky (por ejemplo, los métodos Diff-Quick o Dip-Stat), que permiten diferenciar correc­tamente los eritrocitos (células anucleadas), plaquetas (elementos de menor tamaño) y leu­cocitos (que presentan un núcleo púrpura y un citoplasma azulado). En algunos leucocitos aparecen granulaciones típicas que distinguen neutrófilos de eosinófilos y basófilos.

Extraído de R. Alejandro Pérez-Écija, José Carlos Estepa Nieto, Francisco J. Mendoza García, Interpretación de los parámetros sanguíneos, Ateuves 34, págs. 22-28.